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Histoplasma est l'agent responsable de l'histoplasmose.
Dernière revue: 04.07.2025
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L'histoplasmose est une mycose profonde focale naturelle caractérisée par des lésions prédominantes des voies respiratoires. On distingue l'histoplasmose américaine (H. capsulatum) et l'histoplasmose africaine (H. duboisii), observée uniquement sur le continent africain. Cette dernière se caractérise par des lésions de la peau, du tissu sous-cutané et des os chez les habitants des zones rurales, ainsi que chez les personnes en contact avec le sol et la poussière. Outre les humains, les babouins sont également touchés par cette mycose dans la nature.
Les agents responsables de l'histoplasmose sont Histoplasma capsulatum et H. duboisii.
Morphologie de l'histoplasme
Champignons dimorphes. La phase mycélienne est représentée par un mycélium cloisonné de 1 à 5 μm d'épaisseur, des microconidies sphériques ou piriformes de 1 à 6 μm de diamètre et des macroconidies tuberculées de 10 à 25 μm de diamètre. À 35-37 °C, elles se développent sous forme de cellules de levure, dont la taille est de 1,5-2 x 3-3,5 μm chez H. capsulatum et de 15-20 μm chez H. duboisii.
Propriétés culturelles de l'histoplasme
Les colonies de champignons de type levure sont brillantes et de consistance molle. La température optimale de croissance est de 25-30 °C, avec un pH de 5,5-6,5, mais la croissance est possible dans une large plage de pH (5,0-10,0). L'activité biochimique est faible.
Structure antigénique de l'histoplasme
Elle partage des antigènes avec Blastomyces dermatitidis. Elle possède un antigène des phases levure et mycélienne (histoplasmine). Cultivée en milieu liquide pendant 3 jours, la forme mycélienne produit les exoantigènes h et m, qui peuvent être déterminés par immunodiffusion sur gel. Les facteurs de pathogénicité sont les microconidies, les hydrolases et les polysaccharides pariétaux.
Niche écologique d'Histoplasma
L'habitat naturel est le sol. Le champignon se développe bien dans les sols contaminés par des déjections d'oiseaux et de chauves-souris, où il se développe sous forme de mytélium.
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Écologie
H. duhoisii n'a pas été suffisamment étudié; les rapports sur l'isolement de cette espèce à partir du sol sont isolés.
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Durabilité dans l'environnement
Les microconidies sont très résistantes dans l'environnement extérieur, restant viables dans un sol sec pendant environ 4 ans et dans de l'eau à 4 °C pendant environ 600 jours.
Sensibilité aux antibiotiques
Sensible à l'amphotéricine B et au kétoconazole. Sensible aux antiseptiques et aux désinfectants. Sensible à l'action des antiseptiques et des désinfectants couramment utilisés.
Épidémiologie de l'histoplasmose
Histoplasmose - sapronose. La source de l'agent infectieux pour l'homme et l'animal est le sol des zones endémiques. Ces zones sont situées en Amérique du Nord, en Amérique centrale et en Amérique du Sud, dans les Caraïbes, en Afrique du Sud, en Inde, en Asie du Sud-Est, en Nouvelle-Zélande et en Australie. Les personnes et les animaux malades ne sont pas contagieux. Le mécanisme de transmission est aérogène, la voie de transmission étant aérienne et poussiéreuse. La sensibilité de la population est universelle. Lors des épidémies, le contact des patients avec le sol est détecté. L'épidémiologie de l'histoplasmose africaine n'a pas été suffisamment étudiée.
Symptômes de l'histoplasmose
Les symptômes de l'histoplasmose dépendent du statut immunitaire de l'organisme: des formes aiguës sont observées chez les enfants en raison des particularités de leur système immunitaire; les formes chroniques disséminées se développent généralement dans un contexte d'insuffisance du lien cellulaire de l'immunité. Les manifestations de l'histoplasmose peuvent varier d'une infection pulmonaire aiguë, se terminant par une guérison spontanée, à une histoplasmose caverneuse chronique et à la généralisation de l'infection.
Diagnostic en laboratoire de l'histoplasmose
Le matériel examiné est du pus provenant de lésions ulcéreuses de la peau et des muqueuses, des expectorations, du sang, de l'urine, du liquide céphalo-rachidien, des ponctions de moelle osseuse, de rate, de foie, de ganglions lymphatiques et de tissu sous-cutané.
Le diagnostic en laboratoire repose sur des méthodes microscopiques, mycologiques, biologiques, sérologiques, allergologiques et histologiques. Le travail sur l'agent pathogène est réalisé dans des laboratoires spécialisés dans les infections particulièrement dangereuses.
L'examen microscopique du pus et de l'exsudat révèle des histoplasmes dans les cellules hyperplasiques du système phagocytaire mononucléaire, sous forme de cellules ovales de type levure mesurant 10 à 15 μm, situées à l'extérieur des cellules ou à l'intérieur des monocytes et des macrophages. Les frottis sont colorés selon la méthode de Romanovsky-Giemsa.
Pour isoler une culture pure, le matériel à étudier est inoculé sur milieu de Sabouraud, sérum ou gélose au sang, et des embryons de poulet sont également infectés. De la thiamine est ajoutée au milieu pour stimuler la croissance, et de la pénicilline et de la streptomycine sont ajoutées pour inhiber la croissance bactérienne. Certaines inoculations sont cultivées à 22-30 °C, d'autres à 37 °C pendant 3 semaines. La culture isolée est identifiée par ses caractéristiques morphologiques et les résultats d'un bio-essai sur souris. La détection d'un champignon biphasique présentant une morphologie caractéristique de la phase mycélienne (mycélium finement cloisonné, microconidies et macroconidies tuberculeuses) et des colonies composées de petites cellules permet l'identification de l'encapsulation d'H.
L'isolement de la seule forme mycélienne du champignon nécessite la preuve de son dimorphisme. La transformation s'effectue soit par la culture d'éléments mycéliens à 30-35 °C, soit par infection intrapéritonéale de souris, qui meurent en 2 à 6 semaines, et de petites levures sont détectées dans leurs organes internes.
Une culture pure est isolée par infection intrapéritonéale de souris blanches ou de hamsters dorés. Au bout d'un mois, les animaux sont sacrifiés, le foie et la rate broyés sont ensemencés dans du milieu de Sabouraud avec du glucose, et le pathogène est cultivé pendant 4 semaines à 25, 30 et 37 °C.
L'isolement de la culture en cas d'histoplasmose primaire est difficile en raison des modifications pulmonaires minimes. Dans ce cas, il faut donc se fier aux résultats des réactions sérologiques, dont les plus efficaces sont la RP et la RSK avec histoplasmine. La RP, l'immunodiffusion et l'agglutination au latex sont positives entre la 2e et la 5e semaine suivant l'infection. Plus tard, une RSK positive est détectée, dont les titres augmentent avec la généralisation de l'infection.
Un test intradermique positif à l'histoplasmine (1:100) apparaît à un stade précoce de la maladie et persiste pendant de nombreuses années. Seule la transformation d'une réaction précédemment négative en réaction positive a une valeur diagnostique. Le test intradermique à l'histoplasmine peut stimuler la production d'anticorps; il est donc réalisé après des études sérologiques.
Pour l'examen histologique, les préparations de coupes sont colorées avec le réactif de Schiff, mais la méthode de Gomori-Grocott donne les résultats les plus clairs: les cellules de levure sont colorées en noir ou en brun. Le pathogène peut être détecté dans le cytoplasme des lymphocytes, des histiocytes, sous forme de petites cellules arrondies, simples ou bourgeonnantes.