Infections nosocomiales

Une infection nosocomiale (du latin nosocomium - hôpital et du grec nosokomeo - soigner un patient; synonymes: infections nosocomiales, infections nosocomiales, infection associée aux soins de santé) est toute maladie infectieuse cliniquement reconnaissable qui se développe chez un patient à la suite de sa visite dans un hôpital pour des soins médicaux ou de son séjour, ainsi que toute maladie infectieuse d'un employé d'hôpital qui s'est développée à la suite de son travail dans cet établissement, quel que soit le moment d'apparition des symptômes (après ou pendant un séjour à l'hôpital) - Bureau régional de l'OMS pour l'Europe, 1979. Les infections sont considérées comme nosocomiales si elles se développent au moins 48 heures après l'admission à la clinique (à l'exclusion des cas où le patient est admis dans un établissement médical pendant la période d'incubation d'une maladie infectieuse, dont la durée est supérieure à 48 heures).

Les infections nosocomiales incluent également les cas où un patient est réadmis à l’hôpital avec une infection établie qui était la conséquence d’une hospitalisation antérieure.

Les infections nosocomiales (IN) constituent un grave problème médical, social, économique et juridique dans les unités de soins intensifs du monde entier. Leur fréquence dépend du profil, des caractéristiques architecturales et techniques de l'unité, ainsi que de l'adéquation du programme de contrôle des infections, et s'élève en moyenne à 11 %. Le développement de complications infectieuses chez un patient en réanimation augmente significativement la mortalité, la durée et le coût de l'hospitalisation.

La prévalence des infections nosocomiales associées à l’utilisation de diverses techniques invasives est calculée à l’aide de la formule:

Nombre d'infections nosocomiales sur une période donnée x 1000 - nombre total de jours d'utilisation du dispositif invasif

Selon la surveillance épidémiologique des infections nosocomiales aux États-Unis (2002) du National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS), le taux de prévalence des infections nosocomiales dans les unités de soins intensifs « mixtes » des hôpitaux cliniques, calculé à l'aide de la formule ci-dessus, est de 5,6 pour la NIVL, de 5,1 pour les infections des voies urinaires et de 5,2 pour les infections angiogéniques associées au cathéter pour 1 000 jours d'utilisation/de procédure du dispositif.

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Structure nosologique des infections nosocomiales en réanimation

• Pneumonie nosocomiale, y compris celle associée à la ventilation mécanique.
• Trachéobronchite nosocomiale.
• Infections des voies urinaires.
• Infections angiogéniques.
• Infections intra-abdominales.
• Infections du site opératoire.
• Infections des tissus mous (cellulite, abcès post-injection, escarres infectées).
• Sinusite nosocomiale.
• Méningite nosocomiale.
• Sources d'infection nosocomiale chez les patients en unité de soins intensifs.
• Source endogène (~4/5) - la microflore du patient, présente avant l'admission et acquise à l'hôpital
  • peau, dents, nasopharynx, sinus paranasaux, oropharynx, tractus gastro-intestinal, système génito-urinaire, foyers alternatifs d'infection.
• Source exogène (~1/5)
  • personnel médical, autres patients, matériel médical, instruments, articles de soins, air, aérosols et gaz contaminés, cathéters et seringues non stériles, eau et produits alimentaires.

Les agents pathogènes présents dans les réservoirs exogènes et endogènes sont en interaction dynamique. Une infection causée par la pénétration d'un agent pathogène d'origine endogène chez un patient peut entraîner une épidémie d'infection nosocomiale dans le service par infection croisée. Ce phénomène consiste en la transmission de l'agent pathogène d'un patient à un autre via un réservoir intermédiaire, constitué par le matériel médical, les articles de soins, les mains et les gants du personnel médical. La littérature scientifique fournit des indications sur le rôle des téléphones portables et des phonendoscopes dans la propagation de la microflore hospitalière.

La translocation de bactéries opportunistes du tractus gastro-intestinal joue un rôle majeur dans la pathogenèse des infections nosocomiales. Sous l'effet d'un stress chirurgical, d'un traumatisme, de troubles hémodynamiques et métaboliques, et d'autres pathologies, une ischémie intestinale se développe, entraînant des lésions des entérocytes et une perturbation de leurs fonctions motrices, sécrétoires et de barrière. Une colonisation rétrograde du tractus gastro-intestinal supérieur par des micro-organismes pathogènes se produit, ainsi qu'une translocation de bactéries et de leurs toxines dans la circulation porte et systémique.

L'analyse bactériologique polysystémique chez les patients en unité de soins intensifs a confirmé que la dynamique de contamination de la cavité abdominale, du tractus gastro-intestinal, de la circulation sanguine, des voies urinaires et du tissu pulmonaire dépend de l'insuffisance morphofonctionnelle de l'intestin.

Le développement d'une infection nosocomiale chez un patient en unité de soins intensifs est la conséquence d'un déséquilibre entre les facteurs d'agression des micro-organismes (adhésivité, virulence, capacité à former des biofilms, système de « quorum sensing », induction de la cytokinogenèse, libération d'endo- et d'exotoxines) et les facteurs de défense anti-infectieuse du patient (adéquation fonctionnelle des barrières mécaniques et physiologiques, immunité innée et acquise).

Structure microbiologique des infections nosocomiales dans les unités de soins intensifs

• bactéries Gram-positives
  • S aureus,
  • CoNS,
  • entérocoques.
• bactéries à Gram négatif
  • Entérobactéries (E. coli, K. pneumoniae, Proteus spp, Enterobacter spp, Serratia spp),
  • bactéries non fermentantes (Pseudomonas spp, Acinetobacter spp, Xanthomonas maltophilia),
  • anaérobies (Bacteroides spp, Clostridium difficile).
• Champignons
  • Candida spp,
  • Aspergillus spp.
• Virus
  • virus de l'hépatite B et C,
  • VIH,
  • virus de la grippe,
  • Virus respiratoire syncytial,
  • virus de l'herpès.
• Autres micro-organismes
  • Legionella spp,
  • M. tuberculosis,
  • Salmonella spp.

Plus de 90 % des infections nosocomiales sont d'origine bactérienne. Les agents pathogènes responsables des infections nosocomiales se caractérisent par une résistance accrue aux antimicrobiens. 50 à 100 % des souches de staphylocoques contractées à l'hôpital sont résistantes à l'oxacilline et aux autres bêta-lactamines; les entérocoques présentent une forte résistance à l'ampicilline, à la gentamicine et aux céphalosporines; la littérature étrangère fait état de souches résistantes à la vancomycine; parmi les entérobactéries, on trouve une forte proportion de producteurs de bêta-lactamases à spectre étendu; les agents pathogènes à Gram négatif non fermentants présentent le plus grand potentiel de résistance aux antibiotiques; la plupart des souches sont insensibles aux pénicillines antipseudomonales, aux céphalosporines, aux aminosides, aux fluoroquinolones et, pour certaines, aux carbapénèmes. La structure microbienne et la résistance aux antibiotiques des agents pathogènes responsables d'infections nosocomiales varient en fonction du profil hospitalier, du profil microbien d'un service spécifique et de l'hôpital dans son ensemble, il est donc nécessaire de procéder à une surveillance microbiologique locale.

Lors du traitement des infections nosocomiales, il convient de faire une distinction entre la thérapie empirique et la thérapie étiotrope.

Le choix des médicaments pour un traitement empirique est une tâche complexe, car il dépend de la résistance aux antibiotiques des micro-organismes présents dans l'établissement médical concerné, ainsi que de la présence de maladies concomitantes, de l'étiologie mono- ou polymicrobienne de l'infection et de sa localisation. Il a été établi qu'un choix inadéquat du schéma thérapeutique antimicrobien empirique multiplie par plus de 4 la mortalité chez les patients atteints d'une infection nosocomiale (RR: 4,8, IC à 95 %: 2,8-8,0, p < 0,001). À l'inverse, un traitement antimicrobien initial adéquat a un effet protecteur (RR: 0,27, IC à 95 %: 0,17-0,42, p < 0,001). Il est important de souligner l'importance incontestable de l'analyse microbiologique express avec coloration de Gram du matériel clinique obtenu avant la prescription ou la modification du schéma thérapeutique antibiotique. Cette méthode permet d'obtenir rapidement des informations sur l'agent pathogène suspecté et de planifier un traitement antibiotique de manière différenciée, dès le début.

Sur la base des résultats de l'étude du spectre des agents pathogènes des principales infections nosocomiales et de leur sensibilité aux médicaments antimicrobiens, il est possible de proposer des schémas de thérapie antibactérienne empirique pour les complications infectieuses hospitalières dans les unités de soins intensifs.

Schémas de thérapie antibactérienne empirique pour les infections nosocomiales dans les unités de soins intensifs

Localisation	Résultat de la coloration de Gram	Principaux agents pathogènes	Médicaments de choix
Pneumonie nosocomiale	+	S. aureus	Vancomycine Linézolide
	-	A. baumannii K. pneumoniae P. aeruginosa	Carbapénèmes Céfépime + amikacine Céfolérazone/sulbactam ± amikacine
Infections intra-abdominales	+	Enterococcus spp. S. aureus	Vancomycine Linézolide
		A. baumann P. aeruginosa K. pneumoniae E. coli	Carbapénèmes Céfépime + amikacine Céfolérazone/sulbactam + amikacine
Infections des plaies	+	Enterococcus spp. S. aureus	Vancomycine Linézolide
	-	P. aeruginosa K. pneumoniae	Carbapénèmes ± aminoglycosides (amikacine) Céfépime + amikacine Céfolérazone/sulbactam
Infections angiogéniques	+	S. aureus	Vancomycine Linézolide
Infections des voies urinaires	+	Enterococcus spp. S aureus	Vancomycine Linézolide
	-	K. pneumoniae P. aeruginosa	Fluoroquinolones** Carbapénèmes Céfépime Céfolérazone/sulbactam
	Non peint	Candida spp.	Fluconazole

• * Si une flore mixte aérobie-anaérobie est suspectée, il est conseillé d'inclure dans les schémas thérapeutiques antibactériens initiaux des médicaments à activité antianaérobie (qui n'ont pas leur propre activité antianaérobie).
• ** Lévofloxacine, moxifloxacine, ofloxacine.

Pour le traitement ciblé des infections nosocomiales d'étiologie établie, les schémas thérapeutiques antimicrobiens suivants ont été développés

Thérapie étiotrope des complications infectieuses hospitalières

A. baumannii	Imipénème	0,5 g 4 fois par jour
	Méropénème	0,5 g 4 fois par jour
	Céfopérazone/sulbactam	4 g 2 fois par jour
	Ampicilline/sulbactam	1,5 g 3 à 4 fois par jour
R. aeruginosa	Imipénème	1 g 3 fois par jour
	Méropénème	1 g 3 fois par jour
	Céfépime ± amikacine	2 g 3 fois par jour 15 mg/kg par jour
	Céftazidime + amikacine	2 g 3 fois par jour 15 mg/kg par jour
K. pneumoniae	Imipénème	0,5 g 4 fois par jour
	Céfépime	2 g 2 fois par jour
	Céfopérazone/sulbactam	4 g 2 fois par jour
	Amikacine	15 mg/kg par jour
E. coli, P. mirabilis	Ciprofloxacine	0,4-0,6 g 2 fois par jour
	Amikacine	15 mg/kg par jour
	Imipénème	0,5 g 3 à 4 fois par jour
	Céfopérazone/sulbactam	4 g 2 fois par jour
Enterobacter spp.	Imipénème	0,5 g 3 à 4 fois par jour
	Ciprofloxacine	0,4-0,6 g 2 fois par jour
Candida spp.	Fluconazole	6 à 12 mg/kg par jour
	Amphotéricine B	0,6-1 mg/kg par jour

Facteurs de risque de développement d'infections nosocomiales dans les unités de soins intensifs

Gravité de la maladie sous-jacente, sclérose en plaques, mauvaise alimentation, vieillesse, immunosuppression.

Utilisation de méthodes de traitement et de diagnostic invasives (intubation endotrachéale et ventilation artificielle, création d'accès vasculaire permanent, drainage à long terme de la vessie, surveillance de la pression intracrânienne).

Services surchargés, manque de personnel, présence de « réservoirs vivants » d’infection.

Infection angiogénique

Les maladies suivantes entrent dans cette catégorie:

• complications infectieuses associées au cathétérisme vasculaire à long terme et à la thérapie par perfusion,
• complications infectieuses liées à l'implantation d'un corps étranger dans le système cardiovasculaire,
• endocardite nosocomiale,
• phlébothrombose infectée.

Il a été prouvé que l’infection et la septicémie accompagnent beaucoup plus souvent les procédures de routine effectuées par les anesthésistes et les intensivistes (cathétérisme des veines et des artères centrales et périphériques) que l’implantation de dispositifs intravasculaires à long terme.

Pour un diagnostic rapide des infections associées au cathéter, la peau de la zone du cathéter doit être examinée et palpée quotidiennement (en respectant bien entendu les règles d'asepsie).

Critères diagnostiques cliniques et biologiques des complications infectieuses angiogéniques:

• la présence du SIRS,
• localisation de la source d'infection dans le lit vasculaire en l'absence de foyers extravasculaires,
• bactériémie établie dans au moins un des tests microbiologiques sanguins réalisés de manière dynamique.

Si une infection angiogénique associée au cathéter est suspectée, des critères supplémentaires sont utilisés.

• Identité de l'hémoculture et de la microflore isolées de l'extrémité distale d'un cathéter infecté.
• Croissance > 15 UFC en utilisant le test de colonisation par cathéter semi-quantitatif.
• Le rapport quantitatif de contamination des échantillons sanguins obtenus par cathéter et par veine périphérique était supérieur à 5. Pour diagnostiquer une bactériémie, deux échantillons sanguins ont été prélevés dans des veines périphériques intactes à 30 minutes d'intervalle.

Aucun prélèvement sanguin n'est effectué à partir du cathéter, sauf en cas de suspicion d'infection associée au cathéter. Le prélèvement sanguin est effectué avant la prescription d'antimicrobiens. Si un traitement antibactérien est déjà en cours, le prélèvement sanguin est effectué avant la prise suivante du médicament.

Les principaux mécanismes de développement des infections angiogéniques associées aux cathéters

• colonisation de la surface externe du cathéter avec migration ultérieure de l'espace entre le cathéter et la peau vers l'extrémité interne (intravasculaire) du cathéter,
• colonisation du connecteur avec migration ultérieure le long de la surface interne du cathéter.

La formation de biofilms bactériens est considérée comme le principal facteur de la pathogenèse des infections des cathéters, implants et prothèses. Parmi les bactéries cliniquement significatives, la capacité à former des biofilms a été établie chez des représentants de la famille des Enterobactenaceae: Staphylococcus spp., Streptococcus spp., Enterococcus spp., Actinomyces spp., Pseudomonas spp. et Haemophilus spp.

Agents pathogènes de l'infection angiogénique S. aureus, CoNS, Enterococcus spp, E. coli, K pneumoniae, champignons.

Actuellement, les staphylocoques à coagulase négative sont responsables de près d'un quart des infections angiogéniques, alors qu'auparavant, ces micro-organismes étaient considérés comme de simples contaminants. Il ne s'agit pas seulement d'un phénomène microbiologique ou d'une conséquence d'une mauvaise asepsie. Ce saprophyte n'a pu démontrer sa pathogénicité que dans le contexte d'une immunodépression toujours plus grave, caractéristique de la vie moderne, et face aux conséquences environnementales croissantes de l'utilisation généralisée des antibiotiques.

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Infections urinaires nosocomiales

Sources et voies d'infection des voies urinaires

• microflore des mains du personnel médical et de la zone périurétrale du patient - contamination lors du cathétérisme,
• prolifération de bactéries entre la paroi externe du cathéter et la muqueuse de l'urètre - « infection externe »
• contamination du sac de drainage avec reflux ultérieur du contenu - infection intraluminale,
• infection hématogène.

Jusqu'à 80 % des infections urinaires nosocomiales sont associées à l'utilisation de sondes urinaires et à des interventions instrumentales sur les voies urinaires. Les causes les plus fréquentes de pénétration bactérienne dans la vessie chez les patients porteurs d'une sonde urétrale sont:

• non-respect des règles d'asepsie lors de la pose d'un cathéter,
• déconnexion du cathéter et du tube de drainage,
• contamination lors du lavage de la vessie,
• colonisation du sac de drainage et écoulement rétrograde d'urine contaminée dans la vessie.

Critères diagnostiques de l'infection urinaire nosocomiale

• fièvre > 38 °C, leucocytose, protéinurie, cylindrurie, dysfonctionnement rénal,
• leucocyturie ou pyurie (>10 leucocytes dans 1 mm ³ ),
• isolement du pathogène lors d'un examen microbiologique quantitatif de l'urine à un titre de >10 ⁵ UFC/ml.

L'urine est obtenue par cathétérisme de la vessie avec une sonde urétrale stérile dans le respect des règles d'asepsie et est immédiatement envoyée au laboratoire de microbiologie.

Avec cette approche diagnostique, des infections urinaires sont enregistrées chez 3,7 % des patients en USI.

Agents pathogènes des infections urinaires nosocomiales: E. coli, Klebsiella spp., Proteus spp., Enterococcus spp., Enterobacter spp., Staphylococcus spp., Acinetobacter spp., champignons Candida.

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Médicaments antibactériens pour le traitement des infections urinaires nosocomiales

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Cystite aiguë non compliquée

• fluoroquinolones par voie orale (lévofloxacine, péfloxacine, ofloxacine, ciprofloxacine),
• fosfomycine, trométamol

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Pyélonéphrite chez les patients en unité de soins intensifs

• céftazidime,
• céfopérazone,
• céfépime,
• carbapénèmes,
• fluoroquinolones intraveineuses.

La durée du traitement est d'au moins 14 jours avec contrôle bactériologique obligatoire.

Infections nosocomiales du site opératoire

Ce groupe d'infections, qui représente 15 à 25 % de toutes les infections nosocomiales, comprend les infections des plaies chirurgicales, des brûlures et des plaies traumatiques. Leur fréquence d'apparition dépend du type d'intervention chirurgicale: plaies propres: 1,5 à 6,9 %, plaies partiellement propres: 7,8 à 11,7 %, plaies contaminées: 12,9 à 17 %, plaies « sales »: 10 à 40 %.

L'agent causal principal de l'infection des plaies nosocomiales reste S. aureus, les CoNS sont le plus souvent à l'origine d'infections post-transplantation, E. coli et d'autres représentants de la famille des entérobactéries sont les agents pathogènes dominants en chirurgie abdominale et en infections en obstétrique et gynécologie.

Infections intra-abdominales nosocomiales

On distingue les infections suivantes:

• péritonite secondaire postopératoire,
• péritonite tertiaire,
• troubles de la circulation mésentérique (ischémie/infarctus),
• cholécystite alithiasique,
• nécrose pancréatique infectée,
• perforations gastro-intestinales (ulcères, tumeurs),
• colite pseudomembraneuse associée aux antibiotiques.

Français Dans la structure microbiologique des complications infectieuses nosocomiales intra-abdominales, les micro-organismes Gram négatifs prédominent (63,8 %), parmi lesquels Acinetobacter baumanu (12,8 %), Pseudomonas aeruginos et E. coli (10,6 %) sont les plus souvent isolés. La microflore Gram positive est représentée par diverses souches d'Enterococcus spp. (19,2 %), Staphylococcus aureus - 10,6 % (80 % des staphylocoques dorés isolés sont résistants à l'oxacilline). La structure étiologique des infections nosocomiales intra-abdominales prouve leur nature hospitalière typique. Les agents pathogènes contractés à l'hôpital prédominent, tandis que dans les infections intra-abdominales contractées dans la communauté, le rôle étiologique le plus important est joué par Escherichia, Proteus et Bacteroides.

Médicaments pour le traitement de la colite pseudomembraneuse causée par C. difficile

• métronidazole (par voie orale),
• vancomycine (par voie orale)

Prévention des infections nosocomiales

Des programmes de prévention des infections nosocomiales de qualité, fondés sur des données probantes, peuvent réduire leur incidence, la durée d'hospitalisation et le coût des traitements. La proportion d'infections nosocomiales évitables par des mesures de contrôle des infections est de 20 à 40 %. Ces mesures devraient bénéficier d'un financement prioritaire.

Les principes suivants doivent être respectés:

• formation du personnel,
• contrôle épidémiologique,
• interruption des mécanismes de transmission de l'infection,
• élimination des facteurs supprimant les défenses anti-infectieuses du patient (exogènes et endogènes).

Prévention des infections nosocomiales

Facteurs de risque d'infection nosocomiale	Mesures préventives
Surpopulation des services, concentration de patients infectés dans les unités de soins intensifs, manque d'espace et de personnel	Isolement des patients atteints d'IN, création de postes de soins infirmiers séparés Respect strict des règles d'hygiène des mains antiseptiques Utilisation de gants stériles Utilisation d'antiseptiques hautement efficaces Utilisation préférable de consommables jetables Stérilisation et désinfection de haut niveau
Sélection de souches pathogènes hautement résistantes dans des conditions d'utilisation généralisée de médicaments antimicrobiens (pression sélective des antibiotiques)	Mise en place d'un service de contrôle des infections à l'hôpital (cliniciens + pharmacies + personnes financièrement responsables) Développement de protocoles et de formulaires hospitaliers Surveillance microbiologique locale minutieuse Assurer un traitement initial adéquat pour les infections sévères (thérapie empirique de désescalade) Dosage adéquat des antibiotiques, si nécessaire - surveillance des concentrations plasmatiques Respect du calendrier du traitement antibactérien Exclusion des médicaments inefficaces Rotation des antibiotiques
SKN, translocation de microbes et de leurs toxines chez les patients gravement malades	Décontamination sélective du tractus gastro-intestinal chez les patients présentant un risque élevé de développer une NI Indications: péritonite généralisée, sepsis sévère et myélopathie multiple (de toute étiologie), nécrose pancréatique, transplantation hépatique
Forte probabilité de percée de la microflore fongique à partir d'écotopes endogènes chez les patients en état critique	Prévention de la candidose systémique Indications nécrose pancréatique et interventions chirurgicales sur le pancréas, perforation du côlon, échec anastomotique gastro-intestinal, syndrome post-splénectomie, ventilation mécanique prolongée (> 7 jours), nutrition parentérale prolongée, PON, états immunosuppresseurs (en particulier, thérapie prolongée aux glucocorticoïdes)
Intubation trachéale et ventilation artificielle	Aspiration continue de l'espace sous-glottique Position semi-assise au lit Prévention de la surdistension gastrique Limitation de la prophylaxie des ulcères de stress avec des antiacides Traitement de la cavité buccale avec de la chlorhexidine Utilisation de techniques pour prévenir l'extubation spontanée, respect des règles de réintubation Limitation de l'utilisation de myorelaxants et de dépresseurs du SNC Limitation des indications d'intubation nasotrachéale (risque de sinusite) Trachéotomie « précoce » réalisée dans des conditions stériles Utilisation de systèmes d'aspiration fermés Élimination rapide de tout condensat dans le circuit Utilisation de filtres bactériens
	Cathétérisme vasculaire strictement selon les indications et le respect des conditions de cathétérisme Respect des précautions de contact lors de l'installation du cathéter (gants stériles, blouse, masque, couverture avec du linge stérile) Assurer une stérilité maximale au site de cathétérisme Utilisation d'antiseptiques modernes à l'efficacité prouvée pour le traitement des mains du personnel médical, de la peau du patient, des sites d'injection Entretien minutieux du site d'insertion du cathéter (traitement cutané adéquat, prévention de l'accumulation d'humidité, pansement stérile - gaze ou autocollant semi-perméable transparent, palpation quotidienne du site de cathétérisme ou observation à travers un autocollant transparent) Changement immédiat des systèmes de perfusion après la transfusion de composants sanguins et d'émulsions grasses
	Contrôle de la qualité des milieux de perfusion En l'absence de signes d'infection, ne pas remplacer systématiquement le cathéter veineux central En cas d'infection, ne pas replacer le cathéter sur le fil-guide (changer le site de cathétérisme) Tunnellisation sous-cutanée du cathéter chez les patients du groupe élevé Remplacer les cathéters installés en urgence sans respecter pleinement les règles d'asepsie et d'antisepsie immédiatement après stabilisation de l'hémodynamique du patient, mais au plus tard 48 heures
Sondes urinaires	Formation du personnel aux techniques de cathétérisme Cathétérisme de la vessie uniquement pour des indications strictes Respect strict des règles d'asepsie et d'antisepsie pendant le cathétérisme Cathétérisme intermittent Utilisation de systèmes de drainage fermés Assurer la libre circulation de l'urine Remplacement rapide du cathéter Refus du rinçage de routine du système de drainage et de la vessie
	Avant d'appliquer un antiseptique, le site chirurgical doit être nettoyé avec un détergent. Des antiseptiques à l'efficacité prouvée doivent être utilisés pour préparer la peau du site chirurgical. La glycémie doit être correctement contrôlée chez tous les patients diabétiques, en évitant notamment l'hyperglycémie en période périopératoire. Une prophylaxie antibactérienne périopératoire ne doit être prescrite que lorsqu'elle est indiquée, compte tenu du risque de complications infectieuses. Le médicament utilisé doit être choisi en fonction de son activité contre les agents pathogènes les plus courants responsables des infections du site chirurgical lors d'interventions spécifiques et conformément aux recommandations publiées. Aspects chirurgicaux de la prévention des infections du site chirurgical: hémostase efficace, prévention de l'hypothermie.
Interventions chirurgicales	Préparation du bloc opératoire Équiper des systèmes de ventilation à pression positive de capacité suffisante Filtration de l'air Maintenir un microclimat optimal (température 18-24 °C, humidité 50-55 %) Portes et fenêtres fermées Limitation raisonnable du nombre de personnel Les tapis collants à l'entrée du bloc opératoire et l'irradiation ultraviolette ne doivent pas être utilisés pour prévenir les infections dans la zone chirurgicale Préparation du bloc opératoire et de l'équipe d'anesthésie Une combinaison chirurgicale, un masque et un couvre-chef couvrant entièrement les cheveux sont obligatoires Respect des règles d'hygiène des mains, en s'abstenant d'utiliser des brosses et des éponges avant chaque opération Utilisation de gants stériles de haute qualité Utilisation de deux paires de gants pour un certain nombre d'interventions (opérations orthopédiques, sternotomie) Suspendre le personnel présentant des signes de maladies infectieuses générales et de lésions cutanées infectieuses Préparation du patient Dans la mesure du possible, il est nécessaire d'identifier et de traiter toutes les infections autres que la zone d'intervention, la localisation Ne pas épiler le champ opératoire à moins que cela ne puisse interférer avec l'opération Si nécessaire, épiler immédiatement avant Pour l'épilation, l'épilation doit être effectuée avec des tondeuses et des épilateurs, et non des rasoirs
Cathéters et implants intravasculaires/intracardiaques	Formation du personnel aux règles de travail avec les cathéters, les dispositifs et leur entretien, évaluation périodique des connaissances des règles d'asepsie et d'antisepsie, des compétences en matière de cathétérisme et d'entretien des cathéters
	manipulation soigneuse des tissus, élimination des tissus non viables, utilisation adéquate des drains et du matériel de suture , élimination des petites cavités, soins appropriés de la plaie chirurgicale

Mesures organisationnelles et sanitaires et hygiéniques nécessaires à la prévention de divers types d’infections nosocomiales:

• solutions architecturales et techniques modernes,
• surveillance épidémiologique (ou suivi) des infections nosocomiales,
• isolement des patients présentant des complications purulentes-septiques,
• mise en œuvre du principe d'un nombre minimum de patients par infirmière,
• réduction de la période préopératoire,
• création de protocoles et de formulaires fédéraux et locaux,
• l'utilisation d'antiseptiques très efficaces (ou d'antiseptiques dont l'efficacité est prouvée),
• le strict respect des règles d'hygiène des mains par le personnel médical,
• réaliser une stérilisation et une désinfection de haute qualité,
• formation du personnel aux règles de travail avec les dispositifs et instruments invasifs, évaluation périodique des connaissances des règles d'asepsie et d'antisepsie, des compétences en matière de cathétérisme et d'entretien des cathéters,
• retrait des dispositifs invasifs immédiatement après la disparition des indications cliniques de leur utilisation,
• utilisation de dispositifs invasifs avec des revêtements antimicrobiens et inhibiteurs de biofilm.