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Rage (hydrophobie) - Diagnostic
Dernière revue: 03.07.2025

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Le diagnostic intravitale de la rage consiste à doser l'antigène viral dès les premiers jours de la maladie par la méthode des anticorps fluorescents sur des empreintes cornéennes ou des biopsies cutanées occipitales, ainsi qu'à doser les anticorps entre le 7e et le 10e jour de la maladie. Chez les patients non vaccinés, le diagnostic de rage est confirmé par une multiplication par quatre du titre d'anticorps lors de l'examen de sérums appariés. Chez les patients vaccinés, le diagnostic repose sur le taux absolu d'anticorps neutralisants dans le sérum, ainsi que sur leur présence dans le liquide céphalorachidien. Après une prophylaxie post-exposition, les anticorps neutralisants dans le liquide céphalorachidien sont généralement absents ou leur titre est faible (inférieur à 1:64), tandis que dans le cas de la rage, le titre d'anticorps neutralisants dans le liquide céphalorachidien varie de 1:200 à 1:160 000. À des fins diagnostiques, la PCR est également utilisée pour détecter l'ARN du virus de la rage lors d'une biopsie cérébrale.
Le diagnostic post-mortem de la rage est réalisé par plusieurs méthodes. La méthode histologique est largement utilisée: une méthode rapide, permettant d'obtenir le résultat en 1 à 2 heures avec une fiabilité de 85 à 90 %. Elle repose sur la détection de corps de Babesh-Negri dans des frottis cérébraux. Lorsqu'ils sont traités avec des colorants acides, les corps de Babesh-Negri acquièrent une couleur rubis et une structure interne basophile. Le diagnostic biologique de la rage repose sur l'infection d'animaux de laboratoire (souris blanches, hamsters syriens) avec le matériel d'essai et la détection de corps de Babesh-Negri dans le tissu cérébral après la mort des animaux; le résultat peut être obtenu en 25 à 30 jours. Des méthodes immunologiques sont également utilisées: la méthode des anticorps fluorescents ou ELISA, ainsi que la méthode virologique basée sur l'isolement et l'identification du virus de la rage.
Pour les analyses post-mortem en laboratoire chez l'homme, des échantillons de tissu cérébral (2 à 3 g de tissu cérébelleux, corne d'Ammon, cortex cérébral), de glandes salivaires et de cornée sont utilisés. Ils sont placés dans un récipient stérile contenant une solution de glycérol à 50 % dans du sérum physiologique. Le matériel doit être collecté dans des conditions anti-épidémiques strictes et en respectant les mesures de prévention individuelle, puis livré au laboratoire sous une forme hermétiquement fermée, dans un sac isotherme. La tête est le plus souvent envoyée comme matériel pour les analyses en laboratoire sur les animaux, et si l'animal est petit, le cadavre entier. Le matériel est placé dans des sacs en polyéthylène, puis dans des récipients hermétiquement fermés contenant des morceaux de glace.
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Indications de consultation avec d'autres spécialistes
Une consultation avec un chirurgien est indiquée en présence de plaies multiples lacérées et suppurées, et un neurologue - en présence de symptômes cliniques et biologiques d'encéphalite de nature différente.
Indications d'hospitalisation
Liste des indications d'hospitalisation des victimes de morsures, griffures et bave d'animaux et des patients souffrant d'hydrophobie:
- indications chirurgicales (lacérations multiples, morsures au visage, au cou, aux mains et aux doigts);
- antécédents médicaux chargés;
- plaies de morsure infectées (sauf la main);
- plaies de morsure infectées de la main;
- antécédents allergiques aggravés, personnes présentant des réactions post-vaccinales inhabituelles et des complications aux médicaments antirabiques et personnes revaccinées;
- antécédents neurologiques chargés;
- antécédents psychoneurologiques aggravés;
- Femmes enceintes ayant subi des morsures d’animaux:
- nouveau-nés ayant souffert de morsures d’animaux;
- patients souffrant d'hydrophobie et victimes de morsures d'animaux infectés.
Diagnostic différentiel de la rage (hydrophobie)
Le diagnostic différentiel de la rage est réalisé avec des maladies accompagnées du développement de symptômes cliniques similaires.
Diagnostic différentiel de la rage
Signe |
Rage |
Empoisonnement à l'atropine |
Tétanos |
Lyssophobie |
Période d'incubation |
De 7 jours à 1 an ou plus (généralement 30 à 90 jours) |
2 à 4 heures |
1 à 30 jours |
Non |
Début de la maladie |
Graduel |
Épicé |
Aiguë, subaiguë |
Épicé |
Faiblesse, fatigue |
Caractéristiques |
Caractéristiques |
Caractéristiques |
Manger |
Fièvre |
Caractéristiques |
Pas typique |
Caractéristiques |
Pas typique |
Transpiration |
Manger |
Manger |
Manger |
Non |
Mal de tête |
Manger |
Manger |
Non |
Manger |
Salivation |
Exprimé. Bouche sèche au stade de paralysie |
Bouche et gorge sèches |
Manger |
Non |
Changements mentaux |
Constante |
Manger |
Non |
Manger |
Excitabilité générale |
Manger |
Manger |
Manger |
Manger |
Trouble de la parole et de la déglutition |
Manger |
Manger |
Manger |
Non |
Mydriase |
Manger |
Manger |
Non |
Non |
Agitation psychomotrice |
Manger |
Manger |
Non |
Non |
Hallucinations |
Manger |
Manger |
Non |
Non |
Crampes |
Manger |
Manger |
Oui, dans le contexte d'hypertonie musculaire |
Non |
Détendre les muscles après les crampes |
Manger |
Manger |
Non |
Pas de crampes |
Spasmes des muscles du pharynx. Trismus. |
Périodique |
Non |
Constante |
Non |
Perte de conscience |
Manger |
Manger |
Oui (avant la mort) |
Non |
Hydrophobie |
Manger |
Non |
Non |
Non |
Paralysie, parésie |
Manger |
Non |
Non |
Non |
Progression régulière de la maladie |
Oui |
Non |
Non |
Non |
Hémogramme |
Leucopénie, anéosinophilie |
Pas changé |
Il n’y a pas de changements caractéristiques. |
Pas changé |
LCR |
Pléocytose lymphocytaire. Légère augmentation des protéines |
Pas changé |
En règle générale, cela ne change pas |
Pas changé |